Le LIASHyC vise à être une référence mondiale dans le domaine des systèmes hydrogéologiques complexes grâce à la qualité et à la pertinence de ses travaux de recherche et d’innovation, de formation et de ses activités de transfert. Le programme de recherche et d’innovation porta sur l’hydrogéologie des milieux fissurés, l’hydrogéologie des régions nordiques et alpines, ainsi que sur la caractérisation des hétérogénéités hydrogéologiques. Le LIASHyC est constitué des parties suivantes :
- Institut des sciences de la Terre de l’UNIL (ISTE-UNIL)
- Centre d’Hydrogéologie et de Géothermie de l’UNINE (CHYN-UNINE)
- Centre Eau Terre Environnement de l’INRS
- Département de géologie et de génie géologique de l’Université Laval
La recherche réalisée au Laboratoire ouvert de géothermie (LOG) permet une meilleure compréhension des phénomènes souterrains de transfert de chaleur et d’écoulement diminuant les risques technologiques en géothermie. L'accès au laboratoire est « ouvert », inspiré de la philosophie des logiciels libres.
Le laboratoire BioEngine dans le département de génie chimique de l’Université Laval comporte des équipements et pilotes haut de gamme pour la récupération de ressources à partir des matières résiduelles et des eaux polluées. On y trouve notamment des réacteurs de potentiel méthanogène (BMP), des réacteurs semi-continus de biométhanisation en 1, 2 ou 3 phases, des réacteurs de compostage et conditionnement aérobie contrôlé, un granulateur à lit fluidisé, un pilote de récupération de phosphore par adsorption, un montage de récupération d’azote par stripping et absorption, un bioréacteur à membranes, un station de mesure pour le suivi des paramètres physicochimiques et biologiques à temps réel, ainsi que des équipements pour la caractérisation des eaux et des matières organiques résiduelles.
À Polytechnique Montréal, la subvention FCI-MELS a permis la construction d’espaces d’analyse, de puits d’essai, d’une salle de niveau 2 pour les travaux sur les organismes pathogènes, d’installations pilotes fixes, de chambres froides et de chambres à température contrôlée, de locaux de chimie analytique, de microbiologie et de génie de l'environnement et de halls d'essai, pour une superficie de 800 m2 environ. Ces espaces sont consacrés à des projets en traitement de l’eau potable et des eaux usées et complètent les installations existantes. Deux laboratoires de traitement des boues de pâtes et papier par bioséchage sont également utilisés par les chercheurs du CREDEAU. Les installations disponibles à l’École de Technologie Supérieure, pour une superficie totale de 800 m2 environ, comprennent un hall de pilotes pour les études à grande échelle, un laboratoire d’instrumentation et un laboratoire humide d'analyses, un laboratoire de microbiologie, de physique et de pesée, une chambre à environnement contrôlé permettant de simuler les conditions saisonnières et une salle blanche de recherche en biotechnologie et en nanotechnologie. Un laboratoire de conception de produits et de procédés a été construit à l'Université de Montréal au Pavillon André-Aisenstadt en 2014. Le laboratoire informatisé est équipé du logiciel de simulation de processus BALAS permettant d'obtenir des données d'exploitation hors site en temps réel. Une infrastructure de recherche en phytotechnologie a également été installée au Jardin botanique de Montréal en 2016.
Ces laboratoires permettent d’analyser des échantillons d’eau par colorimétrie, fluorométrie, spectroscopie, radioisotopie et chromatographie, ainsi que d’analyser les composés organiques et les métaux traces présents dans différentes matrices (eau, effluents, boues d’épuration, sols, sédiments, tissus biologiques), et enfin, d’analyser les éléments présents dans des échantillons solides (roches, sols, sédiments, boues). Scanographie par microfluorescence X : Analyses non destructives par radiographie couplées à l’analyse chimique par microfluorescence X de roches, de sols et de sédiments. Microscopie électronique à balayage : Production d’images en haute résolution de la surface et de la composition d’un échantillon à l’aide d’une technologie utilisant les interactions électrons-matière.
/// Caractéristiques:
- Lecteur à microplaque mesurant l’absorbance, la fluorescence ou la luminescence
- Incubation jusqu’à 60°C
- Possibilité de maintenir la chambre de lecture sous 5 % de CO2
- Un injecteur à seringue intégré pour délivrer un substrat, un inhibiteur, une enzyme, etc.
- Possibilité de lecture en continu à chaque 20 millisecondes jusqu’à plusieurs heures
- Possibilité de lire au-dessus ou au-dessous de chaque puits
- Possibilité de lecture en mode excitation et en mode émission de façon simultanée
- Lecture spectrale de 240 à 900 nm (selon les filtres disponibles)
- Contrôle intégré à l’aide d’un logiciel complet
/// Échantillons:
-Liquide
- Analyse en microplaque de 6 à 384 puits
- Ajout de liquide de 5 à 350 µL (par incrément de 0.5 µL) à l’aide de l’injecteur
/// Exemples d’application:
- Dosage de réaction enzymatique en mode discontinu ou continu
- Dosage pour des tests de cytotoxicité, de prolifération et de viabilité cellulaire
- Dosage de la teneur en algues cultivées dans des bioréacteurs
- Dosage de l’ATP dans des extraits cellulaires
- Réalisation de tests ELISA, immuno-essais
- Réalisation de tests antioxydants
- Dosage de composés phosphorescents
/// Exemples d’application:
- Microscopie conventionnelle avec caméra HD d’enregistrement.
Le service est en mesure de répondre à plusieurs besoins dans les domaines animal, végétal ou microbien, notamment :
• Recherche et identification de virus de toutes provenances ;
• Recherche et identification (Gram positif ou Gram négatif) et description de bactéries de toutes provenances
• Recherche et identification de contaminants (ex. : mycoplasmes) dans des échantillons cliniques ou des cultures cellulaires
• Immuno-électromicroscopie avec ou sans or colloïdal sur un échantillon liquide (coloration négative) ou sur des coupes cellulaires (techniques de pré- ou de post-enrobage)
• Contrôle de qualité de fractions virales de gradients de densité
• Morphologie cellulaire sur coupes minces
• Quantification de virus (ex. : Retrovirus) à l'aide de sphères de latex à concentration connue par coloration négative.
• Contrôle de qualité des produits biologiques rejetés à l'égoût municipal
• Recherche de Retrovirus dans des cellules, identification et compte de la proportion des cellules (coupes cellulaires) infectées
/// Caractéristiques:
- Bloc et couvercle avec chauffages/refroidissement ultra rapides (PCR et qPCR)
- Programmation de temperature indépendante en gradient, sur 12 colonnes (PCR et qPCR)
- Gamme de gradient sur plus de 20°C (PCR et qPCR), allant de 4 à 99°C
- Technologie vapo.protect pour réduire l’évaporation des puits (qPCR)
- Lumières DEL génèrent du bleu à 470 nm excitant les fluorophores
(SYBR®Green, FAM, VIC, TET, HEX, ROX, JOE, TAMRA) (qPCR)
- Possibilité de choisir des amorces de type Taqman, Beacon et SYBR (qPCR)
- Logiciel de suivi d’amplification de l’ADN en continu et d’analyse post-amplification (qPCR)
/// Exemples d’application:
- Amplification de gènes cibles chez différents microorganismes (PCR)
- Détection et quantification de gènes cibles (ex. protéines, enzyme) de différents microorganismes (qPCR)
- Suivi (monitoring) de populations bactériennes dans un bioprocédé (qPCR)
- Suivi de l’expression de gènes par l’ARNm et de la variation génotypique
- Optimisation de conditions de procédés par la détection (présence/absence) de pathogènes
Pilote destiné au traitement des eaux, à la pédagogie ainsi qu’à la recherche et au développement. Cet équipement flexible permet de faire des études de faisabilité sur différents types d’eaux contaminées est dotés de :
- Cuve graduée pour le stockage d ‘eaux d’alimentation de 200 L en polyéthylène sur châssis mobile
Pompes d’alimentation en eaux à traiter et pompes doseuses de produits chimiques (correcteur de pH, coagulant. floculant) tout inox avec détection de niveau et débit variable
- Débitmètres
- Réservoirs gradués pour le stockage de produits chimiques (correcteur de pH, coagulant et floculant) de capacité 20 Litres et floculant) de capacité 20 Litres
- Lecture et ajustement de pH avec pH-mètre muni d’électrode de pH incorporé
- Moteur d’agitation à vitesse variable 50 à 2000 tr/min
- Bac de coagulation en PVC transparent de capacité 5 L, mobile, d’agitation turbine Rushton
- Floculateur en PVC transparent de capacité 40 L, mobile, d’agitation hélice
- Décanteur lamellaire en PVC transparent de capacité 100 L avec valve de vidange, angle d’inclinaison des pales variable, écoulement de l’eau par débordement supérieur avec prise d’échantillon, pompe de soutirage des boues
